VIVE. Revista de
Investigación en Salud
https://revistavive.org
Volumen 5 No. 13 enero-abril 2022
https://doi.org/10.33996/revistavive.v5i13.144
ISSN: 2664-3243
ISSN-L: 2664-3243
pp. 233 – 244
Vigilancia epidemiológica de Staphylococcus
aureus y resistencia antibiótica en ambientes
nosocomiales
Epidemiological surveillance of Staphylococcus aureus and the antibiotic resistence in nosocomial environments
Vigilância
epidemiológica de Staphylococcus aureus e
resistência a antibióticos em ambientes nosocomiais
Ana
Gabriela Sánchez Zambrano
anitagabriela18@hotmail.com
https://orcid.org/0000-0002-5979-1009
Paola
Orellana Bravo
porellana@ucacue.edu.ec
https://orcid.org/0000-0001-6276-0521
Carlos Andrade Tacuri
candradet@ucacue.edu.ec
https://orcid.org/0000-0003-3983-1314
Universidad
Católica de Cuenca. Cuenca, Ecuador
Laboratorio de Genética y Biología Molecular
CIITT–La Basílica. Cuenca, Ecuador
Recibido 14 de marzo 2022 / Arbitrado
y aceptado 11 de abril 2022 / Publicado 27 de mayo 2022
RESUMEN
Uno
de los microrganismos más importantes en Infecciones
Asociadas a la Atención en Salud (IAAS) es Staphylococcus
aureus, una bacteria aerobia Gram positiva,
resistente a diferentes condiciones ambientales. Objetivo. Identificar Staphylococcus aureus y su resistencia
a los principales antibióticos Betalactámicos,
aislada en áreas inertes. Materiales y métodos. Se realizó análisis fenotípico,
antibiograma y métodos moleculares como: Extracción de ADN mediante Lisis
Alcalina, identificación molecular para la amplificación de los genes tanto de
identificación de la bacteria (nucA y femB), como de resistencia de antibióticos (blaZ, mecA y vanA)
mediante PCR punto final, la separación de los amplicones
se realizó mediante electroforesis en gel de Agarosa, los productos de la PCR
se revelaron mediante la utilización de transiluminador
UV. Resultados. De 200 muestras tomadas se obtuvo dos muestras positivas
(1%) para Staphylococcus aureus, con el 100% de resistencia a penicilina y
sensible a todos los demás antibióticos testeados. Conclusiones. La
identificación de la bacteria y su resistencia hoy en día se realiza mayormente
mediante métodos moleculares, lo cual no descarta la identificación fenotípica
que, en este caso, determinó resultados importantes como lo es la prueba D-test
positivo. La resistencia a fármacos betalactámicos se
considera como un serio problema de salud, por lo tanto, se requiere de una
vigilancia epidemiológica constante.
Palabras
clave: Staphylococcus aureus; IAAS; nucA; femB; blaZ;
mecA; vanA; Genes;
electroforesis; Reacción en Cadena de la Polimerasa
ABSTRACT
Staphylococcus aureus is one of the most important microorganisms related
to Health Care Associated Infections (HCAI), it is a Gram-positive aerobic
bacterium, highly resistant to the outer environment. Objective.
Identify Staphylococcus aureus and its resistance
to the most common beta-lactam antibiotics in isolated, inert areas. Materials and methods. Phenotypic analysis, antibiogram and molecular testing such as: DNA extraction
by Alkaline Lysis, molecular identification for the
amplification of genes both for identification of Staphylococcus aureus (nucA and femB), and for antibiotic resistance (blah, mega and vanA) by PCR, the disassociation of the amplicons
was preforming by Agarose gel electrophoresis and
results were shown in a UV translluminator. Results. From the 200 samples taken, two
showed positive (1%) for Staphylococcus aureus, with
100% penicillin-resistant and sensitive to all other antibiotics tested. Conclusions. Nowadays identification of the
bacteria and its resistance is carried out mostly through molecular testing,
ruling out phenotypic identification, which in this case it determined
important results such as the positive D-test. Resistance to beta-lactam drugs
is considered a serious health issue, therefore it
requires a safer epidemiological vigilance, an increase in sensitivity testing
and the accuracy of results. It is recommended to carry out the D-test in
laboratories to identify resistance mechanisms and to guide health personnel to
select the best option regarding specific and effective treatment for patients
affected with MRSA.
Key words: Staphylococcus aureus; IAAS; nucA; femB, blaZ,
mecA, vanA, genes,
electrophoresis, Polymerase Chain Reaction
RESUMO
Um dos microrganismos
mais importantes em Infecções Associadas à Saúde (HAIs)
é o Staphylococcus aureus, uma bactéria
aeróbica gram-positiva resistente a diferentes condições ambientais.
Objetivo. Identificar Staphylococcus
aureus e sua resistência aos principais antibióticos betalactam,
isolados em áreas inertes. Materiais e métodos. Análise fenotípica,
antibiograma e métodos moleculares foram realizados tais como: extração de DNA
por Alkaline Lysis,
identificação molecular para a amplificação dos genes tanto da identificação da
bactéria (nucA e femB), e resistência a antibióticos (blaZ,
mecA e vanA) pelo ponto
final da PCR, a separação dos amplicons foi realizada
por eletrofose em gel de Agarose,
os produtos PCR foram revelados usando transiluminador
UV. Resultados. De 200 amostras colhidas, duas amostras positivas (1%)
foram obtidas para o Staphylococcus aureus,
com 100% de resistência à penicilina e sensível a todos os outros antibióticos
testados. Conclusões. A identificação da bactéria e sua resistência hoje
é realizada principalmente por métodos moleculares, o
que não exclui a identificação fenotípica que, neste caso, determinou
resultados importantes como o teste D positivo. A resistência aos medicamentos betalactam é considerada um grave problema de saúde,
portanto, é necessária uma vigilância epidemiológica constante.
Palavras-chave: Staphylococcus aureus; IAAS; nuca; femB; blaZ; mecA;
vanA; Genes; electrophoresis;
Polymerase Chain Reaction
INTRODUCCIÓN
La Organización
Mundial de la Salud define como infección al contacto del paciente con la
bacteria y exposición con superficies inertes o pacientes contaminados (1). Las
Infecciones Asociadas a la Atención en Salud (IAAS) es uno de los principales
motivos de infección a nivel mundial, llevando consigo dificultades tales como
el alargamiento de la estancia hospitalaria, importantes perjuicios económicos,
morbilidad, discapacidad, y mayor resistencia microbiana (2,3).
En Ecuador se
implementó desde el año 2018, a través del Subsistema de vigilancia epidemiológica
para las Infecciones Asociadas a la Atención en Salud (IAAS), el control de dichas
infecciones, dando como resultados tasas altas de contaminación a comparación de
países vecinos. Uno de los microrganismos más
importantes en las IAAS es Staphylococcus aureus (S. aureus), una
bacteria aerobia, Gram positiva, muy resistente y que se adapta a condiciones
ambientales y sobre todos hospitalarias, capaz de colonizar superficies inertes
(4,5). La identificación de esta bacteria se realiza por medio de métodos
fenotípicos y moleculares, el método molecular se basa en la amplificación de
los genes nucA que codifican a enzimas
como la termonucleasa que es producida por casi todas
las cepas de S. aureus y femB
importante componente de la pared celular de esta bacteria (6,7).
Los antibióticos más
usados para contrarrestar las infecciones por S. aureus
son la Penicilina y Metilciclina, pero el mal uso
de estos ha provocado que actualmente muchas sepas sean resistentes a Meticilina y más del 90 % de cepas resistentes a Penicilina,
estas resistencias se encuentran codificadas por los genes mecA (PBP2a) y blaZ
(betalactamasa) respectivamente (8,9).
Si bien se han
realizado varios estudios de Staphyloccoccus
aureus como factor importante de las IAAS y sobre
todo como microorganismo resistente a betalactámicos,
en la ciudad de Cuenca-Ecuador existen pocas referencias específicas sobre los
genes que codifican la resistencia a estos antibióticos en aislados en zonas
inertes.
El objetivo de la
presente investigación es identificar Staphylococcus
aureus y su resistencia a betalactámicos
en áreas inertes en una clínica privada de la ciudad Cuenca en el periodo 2021,
mediante análisis microbiológico y molecular.
MATERIALES Y MÉTODOS
Se realizó un estudio
observacional, de corte transversal. Se usó un muestreo de tipo no
probabilístico por cobertura total de superficies inertes de una clínica
privada en la ciudad de Cuenca-Ecuador, excluyendo áreas de menor contacto del
paciente como recepción y área administrativa e incluyendo áreas críticas de
mayor riesgo de contagio y mayor contacto como: emergencia, pasillos, sala de
espera, quirófano, área de recuperación y hospitalización; cada una de ellas en
sitios específicos como interruptores, manijas de baños y puertas,
dispensadores de gel-jabón, mesas, camillas, roperos, botones de maquinarias de
salud, manijas de inodoros y lavadores. En total se recolectaron 200 muestras
comprendidas entre: 40 muestras en emergencia, 55 muestras en hospitalización 1er
piso, 33 en hospitalización 2do piso, 25 muestras en quirófano, 32 muestras en
sala de parto, 15 en recuperación, al ser superficies inertes se obtuvo
autorización del gerente general de la clínica para proceder con el estudio, la
toma de muestra en la clínica fue de imprevisto para evitar desinfecciones excesivas
y obtener resultados más reales.
Toma de muestra. Las muestras se
obtuvieron mediante la técnica de hisopo estéril en superficies inertes según
las normas INEN– Ecuador, (4) mismos que fueron embebidos en caldo Trypticasa soya en tubos tapa rosca y trasladados al
Laboratorio de Genética y Biología Molecular del Centro de Investigación, Innovación
y Transferencia de Tecnología de la Universidad Católica de Cuenca transcurrida
una hora.
Análisis Fenotípico. Se realizó la siembra
de las muestras en las pruebas fenotípicas más comunes para identificación de S.
aureus, en primer lugar, se procedió con la
siembra de las muestras en agar Manitol Salado, una vez que se presentó el
crecimiento bacteriano en este medio se procedió con las siguientes pruebas microbiológicas:
tinción de GRAM, coagulasa, DNAsa
(10). El antibiograma se realizó en medio de Mueller Hinton y su sensibilidad antibiótica con interpretación en
base al CLSI, 2021 (11).
D-test. En un cultivo de S.
aureus, se coloca un disco antibiótico de clindamicina y otro de eritromicina
con más o menos 15 – 20 mm de distancia formando luego de 24 horas de
incubación una D en aquellas cepas con resistencia inducible a clindamicina del lugar en donde se encuentra el disco de eritromicina presentando una resistencia inducible a clindamicina (12).
Análisis molecular
La extracción de ADN
se realizó mediante el método de lisis alcalina con Sodio Dodecilsulfato
(SDS) al 1% en NaOH al 0,25N (13). La identificación
molecular se realizó mediante reacción en cadena de la polimerasa (PCR, por sus
siglas en inglés) punto final en un termociclador Bioneer, con protocolos específicos tanto para la
determinación de los genes para identificación de la bacteria nucA y femB
(tabla1), como para resistencia de antibióticos de la misma blaZ, mecA y
vanA (Tabla 2) mediante (14) . La separación de los amplicones
productos de la PCR se realizó mediante electroforesis en gel de Agarosa y el resultado
se reveló en un transiluminador UV y se documentó con
una cámara digital con el siguiente protocolo de amplificación: (13). [Ver Tabla
1].
Tabla 1. Protocolo de
amplificación de los genes nucA y femB.
Tabla 2. Protocolo de
amplificación de los genes blaZ, mecA, vanA.
La presente
investigación se realizó bajo las estrictas normas de higiene y desechos de material
nocivo de casas de salud, sin afectar el correcto funcionamiento de la
institución y sus pacientes (15).
RESULTADOS Y
DISCUSIÓN
Se identificó 2
muestras positivas para S. aureus de las 200
recolectadas: 1 en la perilla de entrada de emergencia a hospitalización y la
segunda en la perilla del cajón de almacenamiento de la estación de enfermería
(Tabla 3). Cabe recalcar que se realizó diagnóstico fenotípico en donde se tuvo
positivo en agar Manitol, Coagulasa y DNAsa positivo en las dos muestras y análisis molecular
tanto para identificación de la bacteria como para resistencia.
Tabla 1. Protocolo de
amplificación de los genes nucA y femB.
N. muestra |
Bacteria
aislada |
Servicio |
Zona específica |
31 |
S. aureus |
Emergencia |
Perilla
de la puerta de entrada
al hospital |
94 |
S. aureus |
Estancia
de enfermeria |
Perilla del cajón
de almacenamiento |
El antibiograma
mostró resistencia a penicilina en las dos muestras positivas, y sensibilidad a
los demás antibióticos testeados: cefoxitin, gentamicina, tetraciclina, ciprofloxacina,
levofloxacina, nitrofurantoina,
trimetropin sulfametoxazol,
cloranfenicol, rifampicina y vancomicina
(Ver Tabla 4).
Se identificó D-Test
positivo (Figura1), que refiere a una resistencia inducible a clindamicina por la eritromicina,
es decir se visualiza una distorción del halo de
inhibición alrededor del disco de clindamicina en la
cara que enfrenta al disco de eritromicina (16).
Figura 1. D-test positivo
muestras SARM, formación de la D en los discos de clindamicina
frente al de eritromicina.
Tabla 2. Resultados
antibiogramas.
Muestra |
P |
FOX |
CN |
E |
DA |
TE |
CIP |
LEV |
F |
SXT |
C |
RD |
VA |
31 |
R |
S |
S |
S/R |
S/R |
S |
S |
S |
S |
S |
S |
S |
S |
94 |
R |
S |
S |
S/R |
S/R |
S |
S |
S |
S |
S |
S |
S |
S |
Leyenda: S=Sensible; R=Resistente S/R= Resistencia
inducible. P=penicilina; FOX=cefoxitin;
CN=gentamicina; E=eritromicina;
DA=clindamicina; TE=tetraciclina; CIP=ciproflozacina;
LEV=levofloxacina; F=nitrofurantoina;
SXT=trimetropin sulfametoxazol;
C=cloranfenicol; RD=rifampicina;
VA=vancomicina
Resultados
de las pruebas moleculares
Se confirmó la presencia de la bacteria S.
aureus mediante el resultado positivo para amplificación
de los genes nucA y femB
(Figura 2), propios de la bacteria.
De la misma forma, se obtuvo la amplificación
del gen blaZ (Figura 3) como gen
responsable de la resistencia a la penicilina (betalactamasas)
y confirmado con antibiograma Mueller Hinton (resultados anteriores); además se obtuvieron
resultados negativos para amplificación de los genes mecA
y vanA (fig3), que inducen a la
resistencia a la metilcilina y vancomicina
respectivamente.
Figura 2. Amplificación de
genes (nucA y femB)
para la identificación de S. aureus.
Figura 3. Amplificación de
genes para la resistencia antibiótica de S. aureus.
Discusión
Staphylococcus aureus
resistente
a la metilcilina (SARM) afecta a niños, jóvenes y adultos
desarrollando Infecciones Asociadas a la Atención en Salud (IASS) de gran
importancia (17,18). La bacteria en estudio, S. aureus,
fue analizada en base a las características que posee para colonizar en zonas
hospitalarias a temperaturas que oscilan de 30 a 37°C (3). Por lo tanto, S. aureus, es considerado uno de los principales patógenos
intrahospitalarios, mismo que se ha podido hallar en zonas inertes como
superficies y dispositivos hospitalarios.
En el presente estudio se obtuvo una incidencia
baja (1% 2/200) con un 100% de resistencia a penicilina y sensible a antibióticos
como cefoxitin, gentamicina,
tetraciclina, trimetropin sulfametoxazol.
Los resultados obtenidos y comprobados mediante diagnóstico fenotípico y
molecular dan como positiva la primera muestra para la bacteria en la perilla
de la puerta de entrada de emergencia al hospital y la segunda muestra en la
perilla del cajón de almacenamiento del área de estancia de enfermería. Se
encontraron resultados similares en un estudio realizado por San Martin,
Andrade y Orellana con 6 cepas aisladas de S. aureus
de 200 muestras recogidas con 100% de resistencia a penicilina y
sensibilidad a antibióticos como: trimetoprim sulfametoxazol, rifampicina,
etc., además coinciden que la zona en la que se aisló la bacteria fue en
Emergencia (19).
Un estudio de Medina, Andrade y Orellana, sobre
Detección de Staphylococcus aureus en pantallas de celulares mostró como resultados
un 17,39% (16/92) positivo para S. aureus, el
cual ya genera un porcentaje mayor a los anteriores de crecimiento (20). Del
mismo modo en Mohammedia, Moroco se encuentra que el
48,5% de las bacterias aisladas fueron S. aureus,
87,5% encontradas en el área de emergencia, con una resistencia del 90,3% a
ampicilina y sensibilidad a imipenem, teniendo
características semejantes al estudio realizado, (21). Igualmente, un estudio
sobre Contaminación bacteriana de los teléfonos móviles de los trabajadores de
la salud en Uganda arroga resultados de un 61,11% de resultados positivos para Staphylococcus sin especificar la especie,
con un 90% de resistencia a penicilina y sensibles a gentamicina
(22).
En el Hospital Regional de ICA-Perú de Leveau-Bartra Harry, un análisis bacteriológico de
superficies inertes y sensibilidad antibiótica en el servicio de cirugía
general, tiene como resultado a S. aureus como
una de las bacterias encontradas en el estudio, en el servicio de
cirugía–quirófano con resistencia a penicilina, (23). Asimismo, se realiza
también en la Universidad de Carabobo-Venezuela, una Evaluación microbiológica
de aire y superficies en quirófano de un centro de salud público por Noja Izzeddin, en donde se puede
identificar un 15% de frecuencia para S. aureus en
el área de quirófano, (24). Se da el caso también de un estudio de resistencia
de Cepas de S. aureus aislados en ambientes
nosocomiales por Vallejo, Orellana y Andadre que dan resultados
similares al presente proyecto con un 3% de positivo para la bacteria en Cuenca
Ecuador (25).
En los estudios analizados (18–20,21,23- 25) se encuentran zonas inertes susceptibles para
crecimiento bacteriano tales como mesas, camillas, perillas de puertas,
celulares, siendo estos los principales conductores de Infecciones Asociadas a
la Atención en Salud. Dado es el caso que la baja incidencia de Staphylococcus aureus encontrada
en el presente estudio, puede deberse a que la clínica en donde se tomaron las
muestras, cumple por ordenamiento con normas de higiene y seguridad
implementadas por el INEN y el ARCSA regímenes de control sanitario. Al igual
que los cuidados extremos que las casas de salud adoptan debido a la pandemia
por Covid-19 que estamos atravesando, factores que influyen a que se disminuya
la propagación de dicha bacteria. En el presente proyecto, se obtuvo también
resultados positivos para D-test en las dos muestras ya analizadas de S. aureus, corroborando una resistencia inducible a clindamicina por la Eritromicina
en un 100%. Se compara dichos resultados con los de un estudio por Castellano y Perozo en la Universidad de Zulia Venezuela en
donde se obtuvo resultados de un 31,43% de resistencia constitutiva e inducida
(12). Tal cual un estudio en Paraguay sobre la misma resistencia inducible a clindamicina en Staphylococcus
aureus resistente a metilcilina,
en donde de la cantidad total aislada el 11% es atribuible al mecanismo de
resistencia a clindamicina inducible, lo que afirma
la presencia de la resistencia propiamente dicha (26).
En Chile, en el hospital Luis Calvo Makena, por Montoya y Mira O. de las 155 muestras, el 43,8% resultados positivos a la resistencia (27). De
forma semejante se realiza un estudio en Irán por Azadi
Faezi, y Alka Hasani con resultados de un12% de aislamientos con D-test
positivo (28). Por otra parte, es importante mencionar que no se encuentran
estudios realizados específicamente en Cuenca-Ecuador sobre el D-test, siendo
importante seguir investigando si es que se hace esta prueba en los
laboratorios para identificación de resistencia antibiótica inducida en esta
ciudad. Por lo tanto, los estudios encontrados sobre D-test, coinciden en la
presencia de la resistencia inducible a clindamicina,
un problema de salud que afecta a pacientes que podrían presentar sensibilidad o
resistencia a antibióticos determinados y no tener éxito en su tratamiento.
CONCLUSIONES
Staphylococcus aureus
es
una de las bacterias de mayor incidencia en superficies inertes en casas de
salud, causando serias complicaciones como Infecciones Asociadas a la Atención
en Salud y, debido a la resistencia a antibióticos que complica aún más la
estancia del paciente.
La identificación de la bacteria y su resistencia
hoy en día se realiza mayormente de forma molecular (PCR), descartando identificación
fenotípica que, en este caso, se determinaron resultados importantes como la
prueba D-test positivo en las dos muestras aisladas de S. aureus del presente proyecto. En este sentido, es importante
identificar la resistencia inducible a clindamicina
mediante la formación de una D diferente al halo que comúnmente se ve en el
antibiograma, resultados que no se podrían obtener mediante PCR, puesto que las
amplificaciones de genes serían solamente resultados complementarios.
En base a los resultados obtenidos se pudo
demostrar que, la resistencia a fármacos betalactámicos
constituye un serio problema de salud, por lo tanto, se requiere de una vigilancia
epidemiológica más segura, más sensibilidad en las pruebas realizadas y resultados
más precisos.
Se recomienda realizar de forma rutinaria la
prueba D-test para identificar mecanismos de resistencia específicos y orientar
al personal de salud a tomar la mejor decisión sobre el tratamiento específico
y eficaz para el paciente afectado con SARM.
REFERENCIAS
BIBLIOGRÁFICAS
1. Girard R, Perraud M, Herriot HE, Prüss A. y Savey A. Prevention of
hospital-acquired infections - WORLD HEALTH ORGANIZATION. World
Health Organ [Internet]. diciembre
de 2002; 2nd edition (Department of Communicable Disease, Surveillance and Response):72.
Disponible en: http://www.who. int/emc
2. Álvarez Lerma F, Palomar M, Insausti
J, Olaechea P, Cerdá E,
Sánchez Godoy J, et al. Infecciones
nosocomiales por Staphylococcus aureus
en pacientes críticos en unidades de cuidados intensivos. Med
Clínica [Internet]. mayo de 2006 [citado 12 de
diciembre de 2021];126(17):641-6. Disponible en: https://linkinghub.elsevier.com/retrieve/pii/
S0025775306720450
3.
Inweregbu K, Dave J. y Pittard A. Nosocomial infections.
Contin Educ Anaesth Crit Care Pain [Internet].
1 de
febrero de 2005 [citado 19 de febrero de 2022];5(1):14-7.
Disponible en: https://doi.org/10.1093/bjaceaccp/mki006
4.
González
Herrera SL, Lozada Méndez M. y Santiago Roque I. Análisis bacteriológico de superficies
inertes. Rev Cuba Hig Epidemiol [Internet]. diciembre de
2014 [citado 4 de diciembre de 2021];52(3):314-20. Disponible en:
http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_ abstract&pid=S1561-30032014000300004&ln
g=es&nrm=iso&tlng=es
5.
Stewart GC. Staphylococcus aureus. Foodborne Pathog Microbiol Mol Biol [Internet]. 2005 [citado 19 de
febrero de 2022];273-84. Disponible en:
https://www.cabdirect.org/ cabdirect/abstract/20063045985
6.
Laica
SP, Andrade CF. y Orellana PP. Resistance to
beta-lactams in Staphylococcus aureus isolated from
cell phone screens of dentistry students based on an antibiogram
and detection of blaZ and mecA
genes [Internet]. GMR | Genetics and Molecular Research | The
Original by FUNPEC-RP. 2021 [citado
27 de marzo de 2022]. Disponible
en: https:// www.geneticsmr.com/articles/resistance-betalactams- staphylococcus-aureus-isolated-cellphone- screens-dentistry
7.
Pacheco
MA, Orellana PP. y Andrade CF. Virulence genes in
Staphylococcus aureus isolated from cell phone
screens of dentistry students in Cuenca-Ecuador [Internet]. GMR | Genetics and
Molecular Research | The Original by FUNPEC-RP. 2021 [citado 16 de marzo
de 2022]. Disponible en: https://www. geneticsmr.com/articles/virulence-genesstaphylococcus- aureus-isolated-cell-phonescreens- dentistry-students-cuenca
8.
Castellano
González MJ, y Perozo-Mena AJ. Mecanismos de resistencia a antibióticos β-lactámicos en Staphylococcus aureus. Kasmera [Internet]. junio de 2010 [citado 12 de diciembre de 2021];38(1):18-35.
Disponible en: https://n9.cl/zyh3m
9.
Simor AE, Ofner-Agostini M, Bryce E, Green K, McGeer
A, Mulvey M, et al. The evolution of methicillin-resistant Staphylococcus aureus in Canadian hospitals: 5 years of national surveillance.
CMAJ
[Internet]. 10 de julio de 2001 [citado 19 de febrero de 2022];165(1):21- 6. Disponible en: https://www.cmaj.ca/ content/165/1/21
10.
Dahiya RS, y Speck ML. Hydrogen Peroxide
Formation by Lactobacilli and Its Effect on Staphylococcus aureus1. J Dairy
Sci [Internet]. 1 de octubre de 1968 [citado 19 de febrero
de 2022];51(10):1568-72. Disponible en:
https://www.sciencedirect.com/science/ article/pii/S0022030268872327
11. Hindler JA, Clinical and Laboratory Standards Institute. Analysis and
presentation of cumulative antimicrobial susceptibility test data. 2022.
12. Castellano González
MJ, Perozo Mena AJ, Molero Cubillán M de J, Montero
Araujo S del C. y Primera Rodríguez FJ. Resistencia a la clindamicina
inducida por eritromicina en cepas de Staphylococcus aureus de origen
clínico. Kasmera [Internet]. junio
de 2015 [citado 19 de marzo de 2022];43(1):34-45. Disponible en:
http://ve.scielo.org/scielo.php?script=sci_ abstract&pid=S0075-52222015000100004&ln
g=es&nrm=iso&tlng=es
13. Orbe MLS, Tacuri CFA. y Bravo PPO. Susceptibilidad
de cepas de S. aureus aisladas en superficies
hospitalarias. Rev Vive [Internet]. 4 de mayo de 2021
[citado 16 de diciembre de 2021];4(11):345-57.
Disponible en: http://revistavive.org/index.php/revistavive/ article/view/115
14. Andrade CF. y
Orellana PP. Frecuencia y susceptibilidad a penicilina y meticilina
de aislamientos ambientales de Staphylococcus aureus en un hospital de Cuenca. Kasmera
[Internet]. 2019 [citado 12 de diciembre de 2021];47(2):123-30.
Disponible en: https://www. redalyc.org/jatsRepo/3730/373063318007/
html/index.html
15.Acuerdo-Ministerial-323_Reglamentop
a r a - l a - g e s t i ó n
- i n t e g r a l - d e - l o
s - residuos-y-desechos-generados-en-losestablecimientos-
de-salud.pdf [Internet]. [citado 22 de diciembre de
2021]. Disponible en: https://n9.cl/9j15p
16.
Montoya
C I, Mira O M, Álvarez A I, Cofre G J, Cohen V J, Donoso W G, et al.
Resistencia inducible a clindamicina en Staphylococcus aureus meticilino resistente. Rev Chil Pediatría [Internet]. febrero
de 2009 [citado 18 de marzo de 2022];80(1):48-53. Disponible en: http://www.scielo.cl/scielo.php?script=sci_
abstract&pid=S0370-41062009000100006&ln g=es&nrm=iso&tlng=es
17.
Monroy
TB, Maldonado VM, Martínez FF, Barrios BA, y Vargas LOS. Candida albicans, Staphylococcus
aureus and Streptococcus mutans
colonization in patients wearing dental prosthesis. Med Oral Patol Oral Cir Bucal [Internet]. 28 de noviembre
de 2004;13. Disponible en:
http://www.medicinaoral.com/ pubmed/medoralv10suppl1_i_p27.pdf
18. Harry L-B, Orison L-B, y Alicia
A-A. Análisis bacteriológico de superficies inertes y
sensibilidad antibiótica en el Servicio de Cirugía General del Hospital
Regional de Ica. Rev Médica Panacea [Internet]. 27 de
julio de 2019 [citado 19 de marzo de 2022];8(2). Disponible
en: https://revistas.unica.edu.pe/ index.php/panacea/article/view/5
19.
Orbe
MLS, Tacuri CFA, y Bravo PPO. Susceptibilidad de
cepas de S. aureus aisladas en superficies
hospitalarias. Rev Vive [Internet]. 4 de mayo de 2021
[citado 18 de marzo de 2022];4(11):345-57. Disponible
en: https://revistavive.org/index.php/revistavive/ article/view/115
20. Abad MSM, Andrade
C, Orellana P, y Sarmiento P. Detección de Staphylococcus
aureus en pantallas de celulares de estudiantes de
Odontología mediante PCR. Kasmera [Internet]. 11 de
octubre de 2021 [citado 18 de marzo de 2022];49(2):
e49236014-e49236014. Disponible en:
https://produccioncientificaluz. org/index.php/kasmera/article/view/36014
21. Chaoui L, Mhand R,
Mellouki F, y Rhallabi N.
Contamination of the Surfaces of a Health Care Environment by
Multidrug-Resistant (MDR) Bacteria. Int J Microbiol [Internet]. 29 de noviembre
de 2019 [citado 19 de marzo
de 2022];2019:1-7. Disponible
en: https://www. hindawi.com/journals/ijmicro/2019/3236526/
22. Tusabe F, Kesande M, Amir A, Iannone O, Ayebare RR, y Nanyondo J.
Bacterial contamination of healthcare worker’s mobile phones: a case study at
two referral hospitals in Uganda. Glob Secur
Health Sci Policy [Internet]. 31 de diciembre de 2022 [citado 20 de
marzo de 2022];7(1):1-6. Disponible en: https://doi.org/10.1080/23779497.2021.20233
21
23. Subhedar V, Subhedar R, S P, y Jain S. Bacterial
Contamination of Mobile Phones of Health Care Workers in A
Tertiary Care Hospital. Indian J Appl Res
[Internet]. 1 de agosto de 2015;5:732-5. Disponible
en: https:// www.tandfonline.com/doi/full/10.1080/237794 97.2021.2023321
24.
Izzeddin N, Rodríguez GA,
Medina L, y González L. Evaluación microbiológica de aire y superficies en
quirófano de un centro de salud público. Salus
[Internet]. 2017 [citado 19 de marzo de 2022];21(3):18-
23. Disponible en: https://www.redalyc.org/ journal/3759/375955679005/movil/
25. Vallejo G, Andrade
C, Orellana P, y Ortiz J. Resistencia de cepas de Staphylococcus
aureus aislados en ambientes nosocomiales. Rev Vive [Internet]. 19 de febrero de 2022 [citado 18 de
marzo de 2022];5(13):22-34. Disponible en:
https://revistavive.org/index. php/revistavive/article/view/148
26.
Silvagni M, Guillén R,
Rodríguez F, Espínola C, Grau L, Velázquez G, et al. Resistencia inducible a clindamicina en Staphylococcus aureus resistentes a meticilina
aislados de pacientes pediátricos en Paraguay. Rev Chil Infectol [Internet]. agosto de 2019 [citado 26 de marzo de 2022];36(4):455-60.
Disponible en: https://n9.cl/1vcr9
27.
Montoya
C I, Mira O M, Álvarez A I, Cofre G J, Cohen V J, Donoso W G, et al.
Resistencia inducible a clindamicina en Staphylococcus aureus meticilino resistente. Rev Chil Pediatría [Internet]. febrero
de 2009 [citado 26 de marzo de 2022];80(1):48-53. Disponible en: http://www.scielo.cl/scielo.php?script=sci_
abstract&pid=S0370-41062009000100006&ln g=es&nrm=iso&tlng=es
28.
Faezi NA, Hasani A, Soltani
E, Valizadeh V, Hasani A, Khabbaz A, et al. Plausible challenges of methicillin and
clindamycin resistance detection in Staphylococcus aureus.
Gene Rep [Internet]. 1 de septiembre de 2021 [citado 26 de marzo
de 2022];24:101179. Disponible en:
https://www.sciencedirect.com/ science/article/pii/S2452014421001643
Conflicto
de Intereses. Los
autores declaran que no existe conflicto de intereses para la publicación del
presente artículo científico.
Financiamiento.
Autofinanciamiento.
Agradecimiento.
Se
agradece de sobre manera a la Universidad Católica de Cuenca, en especial a
Laboratorio de Genética y Biología Molecular CIITT – La Basílica por la permisión
obtenida para el uso de los laboratorios para el desarrollo del proyecto. Un
agradecimiento especial al Q.F. Jonnathan Gerardo Ortíz Tejedor MSc. por su
colaboración en el desarrollo tanto teórico como práctico del presente proyecto,
también a José y Violeta por el apoyo incondicional siempre.